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包病毒
- 提前准备好质粒,并通过琼脂糖凝胶电泳确认超螺旋比例正常。将PMD2G和PSAX2质粒分装至小管中,每次使用一管,以减少冻融次数。
- 在12孔板或6孔板中铺板HEK293T细胞,分别向每个孔中加入1mL或2mL培养基。
- 培养HEK293T细胞至90%汇合度,同时确保培养基未因长时间使用而变黄。
- 使用Neofect进行转染。对于12孔板,每个样品使用90μL Opti-MEM,加入0.9μg穿梭质粒、0.3μg PMD2G和0.6μg PSAX2质粒,总计1.8μg质粒,然后加入1.8μL Neofect。(经常性忘记加包装质粒)
- (可选)转染后12小时更换为新鲜培养基。如果穿梭质粒带有荧光标记,此时可在荧光显微镜下进行检测。
- 转染后48小时收集病毒(培养基上清)。使用0.22μM滤器去除细胞碎片,或以4000rpm离心4分钟后过滤细胞碎片。建议提前准备好待感染的细胞,避免冷冻;若必须冷冻,请保存于-80℃。
感染病毒
- 提前准备好待感染的K562细胞,并在感染前将其铺板至12孔板或6孔板中。
- 确保细胞状态良好,感染病毒前更换新鲜培养基。
- 12孔板中每孔接种0.5 million细胞,6孔板中每孔接种1 million细胞。
- 将病毒悬液加入培养基中。具体细胞数量与病毒体积的比例需根据实验条件进行优化。需要注意的是,相同体积的病毒悬液在不同批次中可能具有不同的病毒滴度。
- 将孔板以1000×g离心,室温条件下离心30分钟。
- 离心后将孔板放回培养箱中继续培养。
- 感染12小时后更换新鲜培养基。(这步容易忘)
- 感染后24小时,加药物筛选或跑FACS。